Диагностика повышенного тромботического риска у пациентов с хроническим коронарным синдромом после чрескожного коронарного вмешательства: фокус на иммунную систему и фибринолиз
Авторы:
Организация:
1 ФГБОУ ВО «Российский университет медицины» Минздрава России, Москва, Российская Федерация
2 ГБУЗ «Городская клиническая больница им. И.В. Давыдовского Департамента здравоохранения г. Москвы», Москва, Российская Федерация
3 ФГБУН «Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля» Российской академии наук, Москва, Российская Федерация
4 АНОО ВО «Сколковский институт науки и технологий», Москва, Российская Федерация
Для корреспонденции: Сведения доступны для зарегистрированных пользователей.
Тип статьи: Оригинальные статьи
DOI:
УДК: 616.132.2-089.819.5
Для цитирования: Анисимова А.С., Русакович Г.И., Марюхнич Е.В., Иванова О.И., Кордзая Е.Л., Елизарова А.К., Кононихин А.С., Бугрова А.Е., Захарова Н.В., Николаев Е.Н., Васильева Е.Ю. Диагностика повышенного тромботического риска у пациентов с хроническим коронарным синдромом после чрескожного коронарного вмешательства: фокус на иммунную систему и фибринолиз. Креативная кардиология. 2026; 20 (1): 115–127. DOI: 10.24022/1997-3187-2026-20-1-115-127
Поступила / Принята к печати: 12.01.2026 / 03.03.2026
Ключевые слова:
Скачать (Download)
Аннотация
Цель исследования – определить факторы, ассоциированные с повышенным риском тромботических осложнений у пациентов с хроническим коронарным синдромом (ХКС) после чрескожного коронарного вмешательства (ЧКВ).
Материал и методы. В исследование включены 72 пациента с ХКС после проведения ЧКВ, получающих двойную антиагрегантную терапию (ДААТ). Всем пациентам при поступлении и на 3–5-е сутки после назначения ДААТ проведены оценка активности агрегации тромбоцитов методом импедансной агрегометрии, а также исследование протеома плазмы крови. Через 12 мес был проведен анализ частоты ишемических осложнений, в соответствии с чем пациенты были разделены на две группы: группа 1 – пациенты без ишемических осложнений, группа 2 – пациенты с ишемическими осложнениями.
Результаты. В обеих группах параметры агрегометрии соответствовали целевым (на фоне приема ДААТ) значениям. По результатам масс-спектрометрического анализа плазмы крови между исследуемыми группами было дифференциально представлено 10 белков, 5 из которых участвуют в регуляции активности иммунной системы. При помощи однофакторного регрессионного анализа определены факторы, обладавшие наибольшей прогностической значимостью в отношении тромботических осложнений: количество циркулирующих в крови моноцитов (log ORstd = 2,109; 95% ДИ 2,724–1196,471; p= 0,007) и концентрация ряда белков плазмы крови: тяжела цепь H4 ингибитора интер-ɑ-трипсина (log ORstd = 1,112; 95% ДИ 0,245–2,167; p= 0,013), гелзолин (log ORstd = 1,064; 95% ДИ 0,240–2,097; p= 0,011), ингибитор С1-эстеразы (log ORstd =–1,776; 95% ДИ –3,861…–0,217; p= 0,024) и белок – транспортер фосфолипидов (log ORstd =–2,145; 95% ДИ –4,503…–0,482; p= 0,008).
Заключение. В ходе исследования установлены факторы, уровень которых ассоциирован с повышенным риском тромботических осложнений у пациентов с ХКС после ЧКВ. Перечисленные параметры принимают участие в регуляции активности фибринолитической и иммунной систем, в частности в активации моноцитарного звена, чем может быть обусловлено их влияние на риск тромботических осложнений. Для внедрения выявленных факторов в качестве маркеров в клиническую практику необходимо проведение дальнейших исследований.
Литература
- Mehran R., Baber U., Steg P.G. et al. Cessation of dual antiplatelet treatment and cardiac events after percutaneous coronary intervention (PARIS): 2-year results from a prospective observational study. Lancet. 2013; 382: 1714–1722. DOI: 10.1016/S0140-6736(13)61720-1
- Барабаш О.Л., Карпов Ю.А., Панов А.В. и др. 2024 Клинические рекомендации по стабильной ишемической болезни сердца. Российский кардиологический журнал. 2024; 29: 6110. DOI: 10.15829/1560-4071-2024-6110
- Vrints C., Andreotti F., Koskinas K.C. et al. 2024 ESC Guidelines for the management of chronic coronary syndromes. Eur. Heart J. 2024; 45: 3415–3537. DOI: 10.1093/eurheartj/ehae177
- Collet J.-P., Cuisset T., Rangé G. et al. Bedside monitoring to adjust antiplatelet therapy for coronary stenting. N. Engl. J. Med. 2012; 367: 2100–2109. DOI: 10.1056/NEJMoa1209979
- Cayla G., Cuisset T., Silvain J. et al. Platelet function monitoring to adjust antiplatelet therapy in elderly patients stented for an acute coronary syndrome (ANTARCTIC): an open-label, blinded-endpoint, randomised controlled superiority trial. Lancet. 2016; 388: 2015–2022. DOI: 10.1016/S0140-6736(16)31323-X
- Ridker P.M., Everett B.M., Thuren T. et al. Antiinflammatory therapy with canakinumab for atherosclerotic disease. N. Engl. J. Med. 2017; 377: 1119–1131. DOI: 10.1056/NEJMoa1707914
- Dregoesc M.I., Țigu A.B., Bekkering S. et al. Intermediate monocytes are associated with the first major adverse cardiovascular event in patients with stable coronary artery disease. Int. J. Cardiol. 2024; 400: 131780. DOI: 10.1016/j.ijcard.2024.131780
- Halimeh S., De Angelis G., Sander A. et al. Multiplate® whole blood impedance point-of-care aggregometry: preliminary reference values in healthy infants, children and adolescents. Klin. Padiatr. 2010; 222: 158–163. DOI: 10.1055/s-0030-1249081
- Kononikhin A.S., Starodubtseva N.L., Brzhozovskiy A.G. et al. Absolute quantitative targeted monitoring of potential plasma protein biomarkers: a pilot study on healthy individuals. Biomedicines. 2024; 12 (10): 2403. DOI: 10.3390/biomedicines12102403
- Angiolillo D.J., Galli M., Alexopoulos D. et al. International Consensus Statement on platelet function and genetic testing in percutaneous coronary intervention. JACC Cardiovasc. Interv. 2024; 17: 2639–2663. DOI: 10.1016/j.jcin.2024.08.027
- Mazhar F., Faucon A.-L., Fu E.L. et al. Systemic inflammation and health outcomes in patients receiving treatment for atherosclerotic cardiovascular disease. Eur. Heart J. 2024; 45 (44): 4719–4730. DOI: 10.1093/eurheartj/ehae557
- Piñeiro M., Alava M.A., González-Ramón N. et al. ITIH4 serum concentration increases during acute-phase processes in human patients and is up-regulated by interleukin-6 in hepatocarcinoma HepG2 cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1999; 263: 224–229. DOI: 10.1006/bbrc.1999.1349
- Zhao M., Yoneda M., Ohashi Y. et al. Evidence for the covalent binding of SHAP, heavy chains of inter-α-trypsin inhibitor, to hyaluronan. J. Biol. Chem. 1995; 270: 26657–26663. DOI: 10.1074/jbc.270.44.26657
- Pihl R., Jensen R.K., Poulsen E.C. et al. ITIH4 acts as a protease inhibitor by a novel inhibitory mechanism. Sci. Adv. 2021; 7: eba7381. DOI: 10.1126/sciadv.aba7381
- Osada A., Matsumoto I., Mikami N. et al. Citrullinated interalpha-trypsin inhibitor heavy chain 4 in arthritic joints and its potential effect in neutrophil migration. Clin. Exp. Immunol. 2021; 203: 385–399. DOI: 10.1111/cei.13556
- Zhuo L., Kimata K. Structure and function of inter-α-trypsin inhibitor heavy chains. Connect. Tissue Res. 2008; 49: 311–320. DOI: 10.1080/03008200802325458
- Davis A.E., Mejia P., Lu F. Biological activities of C1 inhibitor. Mol. Immunol. 2008; 45: 4057–4063. DOI: 10.1016/j.molimm.2008.06.028
- Kajdácsi E., Jandrasics Z., Veszeli N. et al. Patterns of C1-inhibitor/plasma serine protease complexes in healthy humans and in hereditary angioedema patients. Front. Immunol. 2020; 11: 794. DOI: 10.3389/fimmu.2020.00794
- Amara U., Flierl M.A., Rittirsch D. et al. Molecular intercommunication between the complement and coagulation systems. J. Immunol. 2010; 185: 5628–5636. DOI: 10.4049/jimmunol.0903678
- Foley J.H., Walton B.L., Aleman M.M. et al. Complement activation in arterial and venous thrombosis is mediated by plasmin. EBioMedicine. 2016; 5: 175–182. DOI: 10.1016/j.ebiom.2016.02.011
- Redecha P., Tilley R., Tencati M. et al. Tissue factor: a link between C5a and neutrophil activation in antiphospholipid antibody-induced fetal injury. Blood. 2007; 110: 2423–2431. DOI: 10.1182/blood-2007-01-070631
- Wilhelm C.R., Ristich J., Kormos R.L., Wagner W.R. Monocyte tissue factor expression and ongoing complement generation in ventricular assist device patients. Ann. Thorac. Surg. 1998; 65: 1071–1076. DOI: 10.1016/S0003-4975(98)00111-8
- Nan J., Meng S., Hu H. et al. The predictive value of monocyte count to high-density lipoprotein cholesterol ratio in restenosis after drug-eluting stent implantation. Int. J. Gen. Med. 2020; 13: 1255–1263. DOI: 10.2147/IJGM.S275202
- Leatham E.W., Bath P.M., Tooze J.A., Camm A.J. Increased monocyte tissue factor expression in coronary disease. Heart. 1995; 73: 10–13. DOI: 10.1136/hrt.73.1.10
- Allen N., Barrett T.J., Guo Y. et al. Circulating monocyte-platelet aggregates are a robust marker of platelet activity in cardiovascular disease. Atherosclerosis. 2019; 282: 11–18. DOI: 10.1016/j.atherosclerosis.2018.12.029
- Furman M.I., Benoit S.E., Barnard M.R. et al. Increased platelet reactivity and circulating monocyte-platelet aggregates in patients with stable coronary artery disease. J. Am. Coll. Cardiol. 1998; 31: 352–358. DOI: 10.1016/S0735-1097(97)00510-X
- Siller-Matula J.M., Christ G., Lang I.M. et al. Multiple electrode aggregometry predicts stent thrombosis better than the vasodilator-stimulated phosphoprotein phosphorylation assay. J. Thromb. Haemost. 2010; 8: 351–359. DOI: 10.1111/j.1538-7836.2009.03699.x
- Gjermeni D., Anfang V., Vetter H. et al. Low on-clopidogrel ADP- and TRAP-6-induced platelet aggregation in patients with atrial fibrillation undergoing percutaneous coronary intervention: an observational pilot study. J. Thromb. Thrombolysis. 2024; 57: 361–369. DOI: 10.1007/s11239-023-02937-0
- Bournazos S., Rennie J., Hart S.P. et al. Monocyte functional responsiveness after PSGL-1-mediated platelet adhesion is dependent on platelet activation status. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2008; 28: 1491–1498. DOI: 10.1161/ATVBAHA.108.167601
- Jiang X.-C., Jin W., Hussain M.M. The impact of phospholipid transfer protein (PLTP) on lipoprotein metabolism. Nutr. Metab. (Lond.). 2012; 9 (1): 75. DOI: 10.1186/1743-7075-9-75
- Robciuc M.R., Metso J., Sima A. et al. Human apoA-I increases macrophage foam cell-derived PLTP activity without affecting the PLTP mass. Lipids Health Dis. 2010; 9: 59. DOI: 10.1186/1476-511X-9-59
- Vuletic S., Dong W., Wolfbauer G. et al. PLTP regulates STAT3 and NF-κB in differentiated THP-1 cells and human monocyte-derived macrophages. Biochim. Biophys. Acta Mol. Cell Res. 2011; 1813: 1917–1924. DOI: 10.1016/j.bbamcr.2011.06.013
- Ullo M.F., D’Amico A.E., Lavenus S.B., Logue J.S. The amoeboid migration of monocytes in confining channels requires the local remodeling of the cortical actin cytoskeleton by cofilin-1. Sci. Rep. 2024; 14: 10241. DOI: 10.1038/s41598-024-60971-1
Об авторах
- Анисимова Александра Сергеевна, кардиолог; ORCID
- Русакович Георгий Игоревич, медицинский статистик; ORCID
- Марюхнич Елена Викторовна, мл. науч. сотр. 1 2; ORCID
- Иванова Оксана Ивановна, науч. сотр.1, мл. науч. сотр.2; ORCID
- Кордзая Елена Лериевна, кардиолог; ORCID
- Елизарова Антонина Константиновна, кардиолог; ORCID
- Кононихин Алексей Сергеевич, ст. науч. сотр.; ORCID
- Бугрова Анна Евгеньевна, ст. науч. сотр.3 4; ORCID
- Захарова Наталья Владимировна, ст. науч. сотр.3 4; ORCID
- Николаев Евгений Николаевич, д-р физ.-мат. наук, профессор, чл.-корр. РАН, директор Проектного центра омиксных технологий и передовой масс-спектрометрии; ORCID
- Васильева Елена Юрьевна, д-р мед. наук, профессор кафедры кардиологии, заведующая лабораторией атеротромбоза 1, президент 2; ORCID

